Selecting a Reversed-Phase Column for the Peptide Mapping Analysis of a Biotherapeutic Protein

Aplikace | 2017 | WatersInstrumentace
Spotřební materiál, HPLC, LC/TOF, LC/HRMS, LC/MS, LC/MS/MS, LC kolony
Zaměření
Proteomika, Klinická analýza
Výrobce
Waters

Význam tématu


Peptidové mapování je zásadní analytickou metodou pro identifikaci, charakterizaci a sledování modifikací bioterapeutických proteinů. Umožňuje detailní rozbor aminokyselinových sekvencí, detekci degradovaných či modifikovaných peptidů a zajišťuje reprodukovatelnost kontrolních metod QC.

Cíle a přehled studie


Studie srovnává výkonnost deseti rozdílných reverzně-fázových (RP) kolonek pro rozlišení peptidů. Použity byly dvě iontově-párovací mobilní fáze (0,1 % TFA a 0,1 % FA), standardní směs peptidů MassPREP a tryptický digesát referenční monoklonální protilátky NISTmAb. Hlavními parametry hodnocení byly kapacita špiček (PC), retence a selektivita.

Použitá metodika a instrumentace


Pro přípravu vzorků bylo použito redukční a alkylační ošetření následované trypsinovou digesí NISTmAb. Analytické podmínky:
  • LC systém: ACQUITY UPLC H-Class Bio, kolony 2,1×150 mm, 1,7–2,7 µm
  • Detekce UV: 214 nm, teplota kolony 60 °C
  • MS: Xevo G2 Q-Tof, ESI+, MassLynx 4.1 a UNIFI 1.8
  • Mobilní fáze: A voda s 0,1 % TFA/FA, B acetonitril s 0,1 % TFA/FA
  • Gradient: 0–95 % B v 35–65 min

Hlavní výsledky a diskuse


  • Kapacita špiček: nejvyšší PC dosáhly CSH C18 (130 Å, 1,7 µm) a CSH Phenyl-Hexyl (130 Å, 1,7 µm).
  • Vliv mobilní fáze: TFA zlepšuje separaci a baseline, FA zvyšuje citlivost MS.
  • Efekt povrchového náboje: kladná CSH fáze má až o 20 % vyšší PC než BEH C18 (130 Å, 1,7 µm) v FA.
  • Vliv velikosti částic: zmenšení z 2,5 na 1,7 µm (CSH C18) zlepšuje PC o 11 % (TFA) a 16 % (FA).
  • Vliv pórovitosti: BEH C18 300 Å nabízí lepší výkon pro peptidy > 1,8 kDa díky menším restrikcím difúze.
  • Retence hydrofilních peptidů: HSS T3 (100 Å) nejvíce posunul retenci malých polárních peptidů.
  • Selektivita: rozdílné ligandy (C18 vs. phenyl-hexyl), hustota ligandu a náboj umožňují optimalizaci rozlišení kritických párů.

Přínosy a praktické využití metody


  • Umožňuje cílený výběr kolony dle požadavků na kapacitu, retenci a selektivitu.
  • Podpora validace a rutinní QC bioterapeutik.
  • Vhodné i pro LC-MS proteomické studie a kvantifikaci syntetických peptidů.

Budoucí trendy a možnosti využití


  • Vývoj nových hybridních a core–shell materiálů pro ještě vyšší PC.
  • Pokročilé režimy (mixed-mode, monolitické fáze).
  • Optimalizace mikro- a nano-LC pro vysokou citlivost.
  • Automatizace a AI-řízené navrhování metod.

Závěr


Pro komplexní peptidové mapování neexistuje univerzální kolona; kombinace menších částic, vhodné pórovitosti a úpravy povrchového náboje se ukazuje jako klíč ke zvýšení kapacity špiček, retence i selektivity. Doporučené fáze zahrnují CSH C18 130 Å, BEH C18 (130 a 300 Å) a HSS T3 100 Å.

Použitá instrumentace


  • ACQUITY UPLC H-Class Bio (Waters)
  • Xevo G2 Q-Tof Mass Spectrometer (Waters)
  • Chromatografický software MassLynx 4.1, UNIFI 1.8

Reference


  1. Sandra K. a kol. Journal of Chromatography A 2014, 1335, 81–103.
  2. Sinha S. a kol. Protein Science 2009, 18, 1573–1584.
  3. Neue U.D. Journal of Chromatography A 2005, 1079, 153–161.
  4. Wyndham K.D. a kol. Analytical Chemistry 2003, 75, 6781–6788.
  5. Wang X. a kol. Analytical Chemistry 2006, 78, 3406–3416.
  6. Lauber M.A. a kol. Analytical Chemistry 2013, 85, 6936–6944.
  7. Neue U.D. a kol. Journal of Chromatography A 2006, 1127, 161–174.
  8. Krokhin O.V., Spicer V. Analytical Chemistry 2009, 81, 9522–9530.

Obsah byl automaticky vytvořen z originálního PDF dokumentu pomocí AI a může obsahovat nepřesnosti.

PDF verze ke stažení a čtení
 

Podobná PDF

Method Development Tools for More Efficient Screening of Biopharmaceutical Method Conditions Using the ACQUITY Arc Bio SystemPart 1 of 2: Screening Multiple RPLC Columns for High Throughput Analysis
Synthetic Peptide Impurity Analysis on Waters Reversed-Phase Columns
Increasing Peak Capacity in Reversed-Phase Peptide Separations  with Charged Surface Hybrid (CSH) C18 Columns
Peptide Mapping and Small Protein Separations with Charged Surface Hybrid (CSH) C18 and TFA-Free Mobile Phases