<div><div><p><span><strong>Společnost Metrohm představuje OMNIS IC - iontovou chromatografii nové generace navrženou na analytické platformě OMNIS, která spojuje maximální flexibilitu, automatizaci a spolehlivost. Systém OMNIS IC je založený na modulárním hardwarovém konceptu a vybavený intuitivním softwarem. Splňuje jak současné, tak i budoucí analytické požadavky a zároveň zajišťuje efektivitu a reprodukovatelné výsledky.</strong></span></p></div></div><div><div><h3><strong>Modulární design pro iontovou chromatografii na míru</strong></h3></div></div><div><div><p><a target="_blank" rel="noopener noreferrer" href="https://labrulez.com/cs-cz/all/products/2612"><strong>OMNIS IC</strong></a> je založen na principu <strong>sestavování jednotlivých modulů</strong>, které zahrnují funkční jednotky, jako jsou <strong>vysokotlaká čerpadla, nástřikové ventily, detektory a dávkovací jednotky</strong>. Tyto komponenty lze podle potřeby různě <strong>kombinovat </strong>a vytvořit tak IC systém na míru. Díky této modularitě mohou laboratoře konfigurovat systémy přesně podle svých analytických požadavků a snadno je rozšiřovat s rostoucí složitostí aplikací.</p></div></div><div><div><h3><strong>Automatizace, která zjednoduší každodenní práci v laboratoři</strong></h3></div></div><div><div><p><strong>OMNIS IC </strong>nabízí vysoký stupeň <strong>automatizace </strong>od <strong>přípravy vzorků až po validaci výsledků</strong>. Automatizovaná inline příprava vzorků – například ředění, filtrace nebo dialýza – v kombinaci s inteligentními nástřikovými technikami, jako jsou partial loop, eliminace matrice nebo pre-koncentrace maximálně eliminuje manuální zásahy, a tím minimalizuje riziko uživatelských chyb.&nbsp; Automatizovaná příprava eluentu spolu s nepřetržitým sledováním hladin kapalin pak navíc pomáhá předcházet přerušení provozu přístroje.</p></div></div><div><div><h3><strong>Spolehlivost a automatická kontrola systému</strong></h3></div></div><div><div><p>K zajištění stabilních a reprodukovatelných výsledků, OMNIS IC <strong>nepřetržitě monitoruje stav celého systému </strong>včetně tlaků, průtoků či hladiny provozních kapalin. Kontroly před spuštěním analýz ověřují správnost seznamů vzorků, zatímco kontroly ekvilibrace zajišťují, že měření začne pouze za stabilních podmínek. Funkce jako <strong>AutoPurge</strong> a <strong>AutoRinse</strong> pomáhají udržovat cestu vzorku bez bublin a zabraňují kontaminaci vzorků mezi jednotlivými cykly.</p><div><div><div><div><div><div><h3><strong>Intuitivní software pro snadné a efektivní ovládání</strong></h3><p>OMNIS IC se ovládá prostřednictvím <a target="_blank" rel="noopener noreferrer" href="https://labrulez.com/cs-cz/all/products/649"><strong>OMNIS softwaru</strong></a>, který nabízí přehledné a intuitivní uživatelské rozhraní. Vizuální ikony, rozevírací seznamy, kontextové popisky a integrovaná nápověda usnadňují rychlé seznámení se systémem a umožňují zkušeným analytikům i novým uživatelům pracovat efektivně, jistě a bez zbytečných komplikací.</p><p><img src="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/Metrohm_Metrohm_predstavuje_OMNIS_IC_a668c200ec.jpg" alt="Metrohm: Metrohm představuje OMNIS IC" srcset="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/thumbnail_Metrohm_Metrohm_predstavuje_OMNIS_IC_a668c200ec.jpg 233w," sizes="100vw" width="600" height="401"></p></div></div></div></div></div></div><div><div><h3><strong>Jedna platforma pro více analytických technologií</strong></h3></div></div><div><div><p>OMNIS IC je plně integrován do <a target="_blank" rel="noopener noreferrer" href="https://www.metrohm.com/cs_cz/products/omnis-platform.html"><strong>OMNIS platformy</strong></a>, takže umožňuje ovládat iontovou chromatografii, titraci i NIR spektroskopii v jednom softwarovém prostředí. Analytické výsledky z různých technik jsou přiřazeny ke konkrétním vzorkům, což pomáhá propojit dříve oddělená data a zjednodušuje tvorbu reportů – například při analýze pitné vody.</p><blockquote><p><img src="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/Metrohm_Meet_OMNIS_IC_The_new_benchmark_in_ion_chromatography_5cfb15cf69.png" alt="Metrohm: Metrohm představuje OMNIS IC: Meet OMNIS IC – The new benchmark in ion chromatography." srcset="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/thumbnail_Metrohm_Meet_OMNIS_IC_The_new_benchmark_in_ion_chromatography_5cfb15cf69.png 245w," sizes="100vw" width="1280" height="720"></p><p><a target="_blank" rel="noopener noreferrer" href="https://www.metrohm.com/cs_cz/products/ion-chromatography/omnis-ic.html"><span><strong>Zjistěte více o&nbsp;OMNIS IC</strong></span></a></p><p>Zúčastněte se naší virtuální premiéry&nbsp;"Meet OMNIS IC – The new benchmark in ion chromatography"&nbsp;29. září:</p><h5><a target="_blank" rel="noopener noreferrer" href="https://labrulez.com/cs-cz/all/webinar/6549"><span><strong>Registrujte se na dopolední sekci (09:00)</strong></span><strong> nebo </strong><span><strong>odpolední sekci (16:00)</strong></span></a></h5></blockquote></div></div></div></div>

Metrohm představuje OMNIS IC

<p><strong>NIST26 přináší integrované zpracování chromatogramů, dekonvoluci a vyhledávání v knihovnách pro data EI GC-MS a LC-MS/MS. Celý postup však začíná jedním zásadním požadavkem: chromatografická data musí být k dispozici ve formátu mzML. James Little ze společnosti Mass Spec Interpretation Services ve své prezentaci</strong> <a target="_blank" rel="noopener noreferrer" href="https://labrulez.com/pdf/Conversion_to_mz_ML_63e134bb34.pdf"><i><strong>Conversion to mzML Format for NIST26 Chromatogram Processing</strong></i></a> <strong>vysvětluje, jak převést data výrobců přístrojů do formátu mzML pomocí softwaru výrobce nebo bezplatného nástroje MSConvert ze sady ProteoWizard. Zároveň upozorňuje na několik nastavení, která jsou pro správné zpracování dat v NIST26 zásadní.</strong></p><h4><span><strong>Zpracování chromatogramů v NIST26 vyžaduje formát mzML</strong></span></h4><p>Pro zpracování chromatogramů popsaným v prezentaci je <strong>mzML akceptovaným vstupním formátem</strong>. Proprietární data z LC-MS nebo GC-MS je proto nutné před načtením do prostředí NIST26 převést.</p><p>Soubor mzML lze získat dvěma základními způsoby:</p><ul><li>převodem pomocí softwaru dodávaného výrobcem přístroje,</li><li>převodem pomocí nástroje <strong>MSConvert</strong>, který je součástí bezplatného softwarového balíčku <strong>ProteoWizard</strong>.</li></ul><p>Použití otevřeného formátu, jako je mzML, zároveň představuje praktický způsob přenosu hmotnostně spektrometrických dat mezi různými softwarovými prostředími bez závislosti výhradně na proprietárních formátech jednotlivých výrobců.</p><h4><span><strong>Použití ProteoWizard a MSConvert</strong></span></h4><p>MSConvert se instaluje jako součást kompletního balíčku ProteoWizard, nikoli jako samostatná aplikace. Po instalaci ProteoWizard mohou uživatelé pracovat buď s grafickým rozhraním MSConvert, nebo s jeho verzí pro příkazovou řádku.</p><p>Pro běžné rutinní použití prezentace doporučuje stabilní verzi softwaru. Novější nebo tzv. nightly build verze však mohou někdy nabídnout lepší podporu novějších proprietárních formátů nebo širší možnosti nastavení filtrů pro zpracování dat. To může být užitečné zejména při práci se soubory, u kterých je třeba věnovat větší pozornost centroidaci nebo detekci píků.</p><p>Pro většinu uživatelů představuje grafické rozhraní jednoduchý způsob, jak převést proprietární surová data do souboru mzML vhodného pro další zpracování v NIST26.</p><h4><span><strong>Začněte výběrem mzML jako výstupního formátu</strong></span></h4><p>Prvním krokem v MSConvert je výběr zdrojového souboru nebo datové sady pomocí funkce <strong>Browse</strong>.</p><p>Software podporuje širokou škálu formátů hmotnostně spektrometrických dat. V okně pro výběr souboru lze zobrazit buď konkrétní formát daného výrobce, nebo všechny podporované spektrální formáty.</p><p>Po výběru zdrojových dat je nutné nastavit jako výstupní formát <strong>mzML</strong>. Ukázky v prezentaci zobrazují toto nastavení přímo v panelu možností MSConvert před spuštěním převodu.</p><p>Před přidáním datové sady do fronty pro konverzi lze rovněž zvolit cílovou složku a další možnosti výstupního souboru.</p><h4><span><strong>Přidání dat a spuštění konverze</strong></span></h4><p>Jakmile jsou vybrány zdrojový soubor a výstupní parametry, soubor se pomocí příkazu <strong>Add</strong> přidá do seznamu pro konverzi.</p><p>Samotný převod se následně spustí tlačítkem <strong>Start</strong>.</p><p>U jednodušších datových sad, které již obsahují spektra ve správné podobě, může být tento postup dostačující. James Little však zdůrazňuje ještě jeden požadavek, který je pro NIST26 obzvlášť důležitý: data musí být <strong>centroidovaná</strong>.</p><h4><span><strong>Centroidovaná data jsou nezbytná</strong></span></h4><p>Podle prezentace nejsou pro tento workflow zpracování chromatogramů v NIST26 vhodná <strong>data v profilovém režimu</strong>. Spektra musí být převedena do centroidované podoby, tedy do formy po detekci píků.</p><p>Profilová spektra obsahují kompletní naměřený tvar jednotlivých signálů v celém rozsahu m/z. Centroidovaná data tyto profily převádějí na jednotlivé diskrétní píky reprezentované charakteristickou hodnotou m/z a intenzitou.</p><p>Pokud jsou původní data výrobce stále v profilovém režimu, lze centroidaci provést přímo během převodu přidáním filtru <strong>Peak Picking</strong> v MSConvert.</p><blockquote><p>Konverze tak může v jednom kroku provést dvě operace:</p><p><strong>proprietární surová data → centroidace / Peak Picking → mzML</strong></p></blockquote><p>Výsledný soubor mzML je následně možné použít jako vstup pro zpracování chromatogramu v NIST26.</p><h4><span><strong>Peak Picking musí být prvním filtrem</strong></span></h4><p>Jedním z nejdůležitějších praktických bodů prezentace je pořadí operace Peak Picking v seznamu filtrů MSConvert.</p><p>Pokud je centroidace nutná, <strong>Peak Picking musí být prvním algoritmem nebo filtrem v seznamu</strong>. Zařazení jiné zpracovatelské funkce před něj může narušit zamýšlený průběh konverze.</p><p>MSConvert umožňuje zvolit filtr Peak Picking, nastavit příslušné úrovně MS a přidat jej do posloupnosti zpracování ještě před spuštěním převodu. Příklad v prezentaci využívá vendor-based peak picking pro vybrané úrovně MS.</p><p>Pokud si uživatel není jistý, zda jsou zdrojová data již centroidovaná, lze filtr Peak Picking přidat i tak. Podle prezentace jeho aplikace na již centroidovaná data soubor zbytečně nemění.</p><p>To může být užitečná pojistka zejména u starších datových sad, u kterých není režim akvizice zcela jistý.</p><h4><span><strong>Výběr správných úrovní MS</strong></span></h4><p>Peak picking nemusí být nutně aplikován stejným způsobem na všechna spektra v datové sadě. MSConvert umožňuje určit <strong>úrovně MS</strong>, na které se má filtr vztahovat.</p><p>To je důležité zejména u LC-MS/MS dat, kde jeden soubor může obsahovat jak MS spektra prekurzorových iontů, tak tandemová MS/MS spektra.</p><p>Nastavení konverze by proto mělo odpovídat způsobu, jakým byla původní data získána, a také tomu, jak budou následně zpracovávána v NIST26.</p><h4><span><strong>Počítejte se změnami velikosti souboru</strong></span></h4><p>Prezentace rovněž upozorňuje, že velikost převedených souborů se může výrazně lišit od původních proprietárních dat.</p><p>To je důležité zejména při práci s rozsáhlými LC-MS/MS datovými sadami nebo při dávkovém zpracování většího množství chromatogramů. Velikost výsledného souboru mzML může záviset na původním režimu akvizice, centroidaci, nastavení komprese, počtu úrovní MS i dalších výstupních parametrech.</p><p>Před převodem rozsáhlejších kolekcí surových dat je proto vhodné počítat také s požadavky na úložný prostor.</p><h4><span><strong>Jednoduchý postup pro přípravu dat pro NIST26</strong></span></h4><p>Celý postup prezentovaný Jamesem Littlem lze shrnout do několika kroků:</p><ol><li>Získejte původní proprietární LC-MS nebo GC-MS data.</li><li>Otevřete data v MSConvert nebo použijte konverzní software výrobce přístroje.</li><li>Nastavte <strong>mzML</strong> jako výstupní formát.</li><li>Ověřte, zda jsou spektra centroidovaná.</li><li>Pokud je to nutné, přidejte <strong>Peak Picking</strong> jako první filtr zpracování.</li><li>Vyberte odpovídající úrovně MS.</li><li>Přidejte soubor do seznamu pro konverzi.</li><li>Spusťte převod.</li><li>Výsledný soubor mzML použijte pro zpracování chromatogramu v NIST26.</li></ol><p>Samotný postup není složitý, ale požadavek na centroidovaná data je zásadní. Soubor může mít správnou příponu <code>.mzML</code>, ale přesto nemusí být pro daný workflow vhodný, pokud jeho spektra zůstávají v profilovém režimu.</p><h4><span><strong>Od proprietárních dat k integrovanému zpracování v NIST26</strong></span></h4><p>Převod datových souborů může na první pohled působit jako méně důležitý krok ve srovnání s dekonvolucí, interpretací spekter nebo knihovním vyhledáváním, ve skutečnosti však tvoří základ celého následného workflow.</p><p>Díky použití mzML jako jednotného vstupního formátu může NIST26 zpracovávat data pocházející z různých přístrojových platforem konzistentnějším způsobem. ProteoWizard a MSConvert představují praktické propojení mezi proprietárními hmotnostně spektrometrickými soubory a tímto standardizovaným formátem.</p><p>Hlavní sdělení prezentace je proto jednoduché: <strong>převeďte data do mzML, ověřte, že jsou spektra centroidovaná, a pokud je centroidace nutná, umístěte Peak Picking jako první filtr v pořadí</strong>. Po splnění těchto podmínek jsou data připravena pro integrované zpracování chromatogramů a vyhledávání v knihovnách v NIST26.</p>

Převod do formátu mzML pro zpracování chromatogramů v NIST26

<p><strong>Velikostně vylučovací chromatografie (SEC) patří k nejpoužívanějším metodám charakterizace biofarmaceutik. Separuje vysokomolekulární formy (HMW), monomer a nízkomolekulární fragmenty (LMW) podle hydrodynamické velikosti. Větší molekuly pronikají do menší části pórů stacionární fáze a eluují se dříve, zatímco menší molekuly vstupují do většího objemu pórů a eluují se později.</strong></p><p>Robustní metoda vyžaduje sladění velikosti analytu s distribucí pórů, vhodnou velikost částic a omezení nespecifických interakcí. To je zásadní u protilátek, konjugátů protilátka-léčivo (ADC), oligonukleotidů, mRNA i virových částic. Portfolio Sepax zahrnuje kolony pro <strong>UHPLC, HPLC, FPLC</strong> i <strong>preparativní</strong> použití.</p><p><img src="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/Altium_Princip_SEC_chromatografie_122fc6bca4.jpg" alt="Altium: Princip SEC chromatografie" srcset="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/thumbnail_Altium_Princip_SEC_chromatografie_122fc6bca4.jpg 234w," sizes="100vw" width="1536" height="1024"></p><h4><strong>Selektivita začíná u velikosti pórů</strong></h4><p>SEC nerozděluje molekuly přímo podle molární hmotnosti, ale podle hydrodynamické velikosti, kterou ovlivňuje tvar, konformace, solvatace, glykosylace i stav asociace. Rozsah molárních hmotností je proto pouze orientační; optimální fázi určí experimentální screening.</p><p>Příliš malé póry mohou vylučovat cílový analyt i jeho agregáty, takže se eluují blízko mrtvého objemu a jejich rozlišení klesá. Příliš velké póry poskytují složkám podobný přístup do porézního objemu a selektivitu rovněž snižují. Pro monoklonální protilátky a jejich rozpustné agregáty je obvyklým výchozím bodem fáze s velikostí pórů okolo 300 Å. Menší proteiny, peptidy a oligonukleotidy často vyžadují 80 - 150 Å, zatímco mRNA a virové částice podstatně širší póry.</p><p><strong>Zenix a Zenix-C</strong> nabízejí póry 80 - 300 Å. SRT a SRT-C pokrývají přibližně 100 - 2000 Å a rozšiřují screening na velké nukleové kyseliny a virové vektory. Preparativní SRT-10 a SRT-10C umožňují vyšší zatížení.</p><h4><strong>Velikost částic určuje účinnost a tlak</strong></h4><p>Menší částice zvyšují účinnost a rozlišení, ale také protitlak a citlivost k mimokolonové disperzi. <strong>Unix a Unix-C</strong> s částicemi 1,8 µm jsou určeny pro UHPLC, Zenix a Zenix-C s částicemi 3 µm pro HPLC. SRT a SRT-C s částicemi 5 µm představují kompromis mezi účinností a robustností, zatímco SRT-10 a SRT-10C s částicemi 10 µm jsou vhodné i pro preparativní aplikace.</p><p>U kolon o průměru 4,6 mm s částicemi pod 3 µm je nutné minimalizovat mimokolonový objem krátkými kapilárami, malou detekční celou a nízkým nástřikem. Při převodu z kolony 7,8 mm nelze bez přepočtu zachovat průtok ani injekční objem.</p><p><img src="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/Altium_Obrazek_SEC_analyza_agregatu_bispecifickych_protilatek_na_kolonach_Sepax_SRT_C_300_A_a_Zenix_C_300_A_1abe6a3cfd.jpg" alt="Altium: Obrázek: SEC analýza agregátů bispecifických protilátek na kolonách Sepax SRT-C 300 Å a Zenix-C 300 Å (7,8 × 300 mm) při průtoku 1,0 ml/min. Kolona Zenix-C s částicemi 3 µm poskytla vyšší účinnost separace. Mobilní fáze: 50 mM fosfátový pufr, 250 mM KCl, pH 7,0; detekce při 280 nm." srcset="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/thumbnail_Altium_Obrazek_SEC_analyza_agregatu_bispecifickych_protilatek_na_kolonach_Sepax_SRT_C_300_A_a_Zenix_C_300_A_1abe6a3cfd.jpg 245w," sizes="100vw" width="1233" height="585"></p><h4><strong>Chemie povrchu omezuje sekundární interakce</strong></h4><p>Ideální SEC je neadsorpční, biomolekuly však mohou interagovat s reziduálními silanolovými skupinami, vázanou fází, kovovými povrchy systému nebo hydrofobními oblastmi náplně. Důsledkem bývá opožděná retence, chvostování píků, nižší výtěžnost nebo zkreslený obsah agregátů. Riziko je vyšší u bazických a hydrofobních proteinů, ADC a PEGylovaných produktů.</p><p>Fáze Sepax využívají hydrofilní vázané vrstvy omezující kontakt analytu se silikagelem. Standardní řady <strong>Unix, Zenix, SRT a SRT-10</strong> jsou vhodné pro <strong>běžné proteiny</strong>. Varianty „<strong>-C</strong>“ jsou určeny pro analyty náchylné k hydrofobním a dalším nespecifickým interakcím, například <strong>ADC, derivatizované protilátky</strong> nebo<strong> PEGylované a fúzní proteiny.</strong></p><p><strong>BioMix</strong> kombinuje velikostní separaci s řízeným příspěvkem hydrofobních interakcí. Může tak rozlišit biomolekuly podobné velikosti, ale rozdílné povrchové hydrofobity, například správně a chybně spárované bispecifické protilátky.</p><p><img src="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/Altium_Obrazek_3_Analyza_spravne_a_chybne_sparovanych_forem_bispecificke_protilatky_d12ea84383.jpg" alt="Altium: Obrázek: Analýza správně a chybně spárovaných forem bispecifické protilátky na kolonách Sepax BioMix SEC 300 Å a Zenix-C SEC 300 Å (7,8 × 300 mm). BioMix poskytla vyšší selektivitu pro chybně spárované formy, zatímco Zenix-C minimalizovala nespecifické interakce." srcset="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/thumbnail_Altium_Obrazek_3_Analyza_spravne_a_chybne_sparovanych_forem_bispecificke_protilatky_d12ea84383.jpg 245w," sizes="100vw" width="1152" height="332"></p><h4><strong>Praktický výběr kolony</strong></h4><p>Nejprve je třeba definovat cíl metody: kvantifikaci agregátů, rozlišení fragmentů, popis distribuce velikostí nebo preparativní sběr. Následuje screening dvou až tří velikostí pórů, volba částic a průměru kolony podle tlakového limitu, množství vzorku a požadované propustnosti a porovnání standardní chemie s variantou „<strong>-C</strong>“.</p><p>Výchozí mobilní fází bývá neutrální fosfátový pufr s dostatečnou iontovou silou pro potlačení elektrostatických interakcí. Podle chování analytu lze upravit <strong>koncentraci soli, pH, typ pufru</strong> nebo přidat <strong>malé množství organického modifikátoru</strong>. Změny však mohou ovlivnit konformaci a stav asociace proteinu, a tím i zdánlivý obsah agregátů. Injekční objem i hmotnostní zatížení mají zůstat nízké; průtok a teplota se optimalizují až po výběru pórů a povrchové chemie.</p><p>SEC lze kombinovat s <strong>UV, refraktometrickou</strong> detekcí nebo <strong>MALS</strong>. SEC-MALS s koncentračním detektorem poskytuje molární hmotnost napříč píkem a pomáhá odlišit skutečnou změnu velikosti od anomální retence.</p><p><img src="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/Altium_Obrazek_4_Separace_Cas9_m_RNA_a257da9cf1.jpg" alt="Altium: Obrázek: Separace Cas9 mRNA a jejích vysokomolekulárních agregátů na kolonách Sepax SEC a srovnávacích kolonách. Kolony Sepax s částicemi 5 µm a póry 1000 nebo 2000 Å (4,6 × 300 mm) poskytly vysoké rozlišení HMW forem. Mobilní fáze: 50 mM Tris, 200 mM NH₄Cl, pH 7,5; detekce UV při 260 nm a MALS." srcset="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/thumbnail_Altium_Obrazek_4_Separace_Cas9_m_RNA_a257da9cf1.jpg 245w," sizes="100vw" width="1221" height="556"></p><p><img src="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/Altium_portfolio_kolon_Sepax_8717cb2189.jpg" alt="Altium: Portfolio kolon Sepax SEC" srcset="https://storage.googleapis.com/labrulez-bucket-strapi-h3hsga3/thumbnail_Altium_portfolio_kolon_Sepax_8717cb2189.jpg 245w," sizes="100vw" width="1600" height="930"></p><h4><strong>Závěr</strong></h4><p>Spolehlivá SEC metoda vychází z koordinované volby pórů, částic, chemie povrchu, formátu kolony a mobilní fáze. Portfolio Sepax SEC poskytuje ucelený rámec od 1,8µm UHPLC analýzy až po 10µm semi-preparativní a preparativní separace, s velikostmi pórů pokrývajícími malé proteiny a oligonukleotidy až po mRNA a virové částice. Umožňuje tak vyvíjet metody s lepší selektivitou, výtěžností a robustností jak u zavedených biologických léčiv, tak u nastupujících terapeutických modalit.</p><blockquote><h5><strong>Pro další informace neváhejte kontaktovat:&nbsp;</strong></h5><ul><li>Irena Palíková, Altium International s.r.o.</li><li><strong>irena.palikova@altium.net</strong></li></ul></blockquote>

Moderní SEC chromatografie pro charakterizaci biofarmak

Akademie

Software

Video

Článek

Produkt

Naše společnost nabízí řešení v oblasti iontové analýzy pomocí titrace, iontové chromatografie, voltametrie a polarografie.

Metrohm Česká republika

Je autorizovaným distributorem společnosti Agilent Technologies pro Českou republiku v oblastech chromatografie (GC, HPLC, UHPLC, kapilární elektroforéza) a hmotnostní spektrometrie (GC/MS, LC/MS, CE/MS), disolučních aparátů, molekulární (UV-Vis, UV-Vis-NIR, fluorescence, FTIR analyzátory a mikroskopy) a atomové spektroskopie (ICP-OES, ICP-MS, AAS), a v neposlední řadě také v oblasti molekulární biologie a genomiky (analýza nukleových kyselin a proteinů, microarray skenery a skla, PCR & RT-PCR, qPCR, řešení pro NGS, reagencie pro mutagenezi a klonování, sondy FISH a další).

Altium International

Mým hlavním zájmem je identifikace organických sloučenin hmotnostní spektrometrií v organických směsích.

James Little/Mass Spec Interpretation Services

Shimadzu LC-20AD HPLC čerpadlo (Nový)

Shimadzu LC-20AD čerpadlo pro přesnou a spolehlivou dodávku rozpouštědel v různých analytických aplikacích, součást řady Prominence.

Shimadzu SIL-20AC Autosampler (Nový)

Shimadzu SIL-20AC Autosampler vybaven funkcí chlazení.

Shimadzu CBM-20A Lite Controller (Nový)

Shimadzu CBM-20A Lite Controller se instaluje buď k čerpadlu, nebo k autosampleru. 

Shimadzu FCV-14AH (Nový)

Tento modul provádí automatickou volbu kolony a obsahuje 7portový, 6polohový vysokotlaký ventil. Lze ji použít pro automatické přepínání více kolon.

Shimadzu LOW PRESSURE GRADIENT UNIT (Nový)

Volitelná nízkotlaká gradientová jednotka může být zabudována do čerpadel LC-20AD/20A.

Shimadzu SIL-20AXR Autosampler (Nový)

Autosampler SIL-20AXR, který umožňuje rychlý nástřik a zpracování více analytů.

Shimadzu SIL-20ACXR Autosampler (Nový)

Shimadzu SIL-20ACXR Autosampler vybaven funkcí chlazení.

Shimadzu LC-20ADXR (Nový)

Shimadzu LC-20ADXR čerpadlo pro přesnou a spolehlivou dodávku rozpouštědel v různých analytických aplikacích, součást řady Prominence.

Shimadzu SIL-10AP; CE (Nový)

Injektory Shimadzu SIL-10AP používají metodu vstřikování s pevnou smyčkou.


Shimadzu SIL-20AHT UFLC Autosampler (Nový)

Autosampler SIL-20AHT používán se systémem Prominence UFLC umožňuje ultra rychlou analýzu.

Mohlo by Vás zajímat

Moderní SEC chromatografie pro charakterizaci biofarmak

Převod do formátu mzML pro zpracování chromatogramů v NIST26

Metrohm představuje OMNIS IC