Characterizing Protein–Protein Interactions Via Static Light Scattering: Inhibition Kinetics and Dissociation

Technické články | 2010 | WatersInstrumentace
GPC/SEC
Zaměření
Proteomika
Výrobce
Waters

Význam tématu


Analýza kinetiky asociace, disociace a agregace proteinů v roztoku je zásadní pro porozumění biologickým procesům a vývoj biotechnologických aplikací. Statické rozptylování světla (MALS) nabízí přímé měření molární hmotnosti a velikosti komplexů bez nutnosti značení či imobilizace.

Cíle a přehled studie / článku


Cílem článku je prezentovat automatizovaný postup časově rozlišeného statického rozptylování světla (TD-MALS) pro vyhodnocení kinetiky disociace protein–protein komplexů v roztoku. Systém Calypso integrovaný s detektory MALS (DAWN-HELEOS) a refraktometrem (Optilab rEX) umožňuje opakované měření při různých podmínkách bez manuálního zásahu. Jako modelový systém je využita autoasociace alfa-chymotrypsinu a jeho inhibice AEBSF.

Použitá metodika a instrumentace


  • CG-MALS pro stanovení rovnovážných stavů komplexů bez značení a imobilizace.
  • TD-MALS s Calypso triple-syringe pump: automatizované příprava a dodávka vzorků a následné zastavení průtoku ve statickém mixéru.
  • DAWN-HELEOS MALS detektor pro měření úhlu závislého rozptylu a Optilab rEX pro stanovení koncentrace na základě refrakčního indexu.
  • Příprava vzorků: chymotrypsin v 100 mM NaCl sitrátovém pufru pH 3,8, AEBSF v tomtéž pufru, filtrace 0,02 µm.

Hlavní výsledky a diskuse


Při konstantní koncentraci chymotrypsinu a zvyšujících se koncentracích AEBSF (0–5 mM) se zaznamenal exponenciální pokles signálu rozptylu světla, odpovídající disociaci dimerů do monomerů. Časové konstanty τ byly extrahovány z křivek rozptylu světla a závislosti na poměru inhibitor–protein analyzovány podle kinetického modelu obsahujícího reverzibilní i ireverzibilní vazbu. Základní kinetický parametr poměru KM/k+2 byl určen z lineární regrese a koeficient disociační konstanty Kd pro dimer–monomer byl odhadnut na ~18 µM. Tento výsledek odpovídá hodnotám získaným z CG-MALS (~25 µM) a enzymatických metod (14–20 µM).

Přínosy a praktické využití metody


  • Možnost studovat kinetiku bez značení, štítování či imobilizace proteinů v jejich přirozeném stavu.
  • Automatizace procesu zabraňuje laboratorním chybám a umožňuje dlouhodobé experimenty trvající od minut po hodiny.
  • Platforma je vhodná pro kvantifikaci rodných i heteroasociací, inhibičních mechanismů a agregace biologicky aktivních molekul.

Budoucí trendy a možnosti využití


Metoda TD-MALS se může rozšířit na analýzu vazebných kinetik antigen–protilátka, oligomerizace a tvorby metakomplexů. Další aplikace lze nalézt ve vývoji terapeutických proteinů, stabilitě formulací, studiu mezimolekulárních interakcí v reálném čase a kombinaci s kompozitní gradientovou analýzou pro komplexní charakterizaci systému.

Závěr


Automatizovaný systém Calypso s detektory TD-MALS představuje efektivní nástroj pro detailní studium kinetiky protein–protein a protein–inhibitor interakcí v roztoku. Poskytuje spolehlivé kinetické a rovnovážné parametry bez nutnosti modifikace vzorku, což otevírá prostor pro široké biochemické a farmaceutické aplikace.

Reference


  • Some D., Hanlon A., Sockolov K. Characterizing protein–protein interactions via static light scattering: reversible heteroassociation. American Biotech Laboratory, 2008, 26(4):18–20.
  • Flamig D.P., Parkhurst L.J. Kinetics of the alkaline tetramer–dimer dissociation in liganded human hemoglobin: a laser light-scattering stopped flow study. Proc Natl Acad Sci U S A, 1977, 74(9):3814–3816.
  • Görisch H., Goss D.J., Parkhurst L.J. Kinetics of ribosome dissociation and subunit association studied in a light-scattering stopped-flow apparatus. Biochemistry, 1976, 15(26):5743–5753.
  • Lyles D.S., McKenzie M.O., Hantgan R.R. Stopped-flow, classical, and dynamic light-scattering analysis of matrix protein binding to nucleocapsids of vesicular stomatitis virus. Biochemistry, 1996, 35(20):6508–6518.
  • Lai E., van Zanten J.H. Monitoring DNA/poly-L-lysine polyplex formation with time-resolved multiangle laser light scattering. Biophys J, 2001, 80(2):864–873.
  • Bernocco S., Ferri F., Profumo A., Cuniberti C., Rocco M. Polymerization of rod-like macromolecular monomers studied by stopped-flow, multiangle light scattering: set-up, data processing and application to fibrin formation. Biophys J, 2000, 79(1):561–583.
  • Gilleland M.J., Bender M.L. Kinetics of chymotrypsin dimerization. J Biol Chem, 1976, 251(2):498–502.
  • Mintz G.R. An irreversible serine protease inhibitor. Biopharm, 1993, 6(2):34–38.
  • Kameyama K., Minton A.P. Rapid quantitative characterization of protein interactions by composition gradient static light scattering. Biophys J, 2006, 90(6):2164–2169.
  • Some D., Berges A., Ferrullo J., Hitchner E., Yang J. TD-MALS characterization of antibody–antigen interaction kinetics. International Light Scattering Conference, 2008.

Obsah byl automaticky vytvořen z originálního PDF dokumentu pomocí AI a může obsahovat nepřesnosti.

PDF verze ke stažení a čtení
 

Podobná PDF

Characterizing Protein–Protein Interactions Via Static Light Scattering: Reversible Heteroassociation
SEC-MALS and CG-MALS: Complementary Techniques to Characterize Protein-DNA Complexes
Evaluation binding of individual and combined domains in the bacterial flagellar motor complex by CG-MALS
Understanding antibody and viral glycoprotein interactions using CG-MALS