Phospholipid characterizationby a TQ-MS data basedidentifcation scheme

Postery | 2017 | ShimadzuInstrumentace
LC/MS, LC/MS/MS, LC/QQQ
Zaměření
Lipidomika
Výrobce
Shimadzu

Význam tématu


Fosfolipidy jsou klíčovými stavebními složkami buněčných membrán, hrají roli v transportu lipidů, skladišťují energii a slouží jako prekurzory mediátorů. Změny v poměru fosfolipidů v krvi a tkáních korelují s různými onemocněními, proto je jejich přesná kvantifikace nezbytná pro porozumění biologickým funkcím a detekci biomarkerů.

Cíle a přehled studie


Cílem studie bylo navrhnout schéma identifikace a kvantifikace fosfolipidů založené na dvojím skenování hmotnostního spektra (precursor ion scan a neutral loss scan) na trojitém kvadrupólu nízkého rozlišení a následném databázovém vyhledávání v programu SimLipid. Modelovou aplikací bylo sledování změn fosfolipidového profilu jater myší po podání fluorescenční sondy na bázi uhlíkových nanotrubiček.

Použitá metodika


  • Příprava vzorků: tkáň jater byla izolována 5 hodin po intravenózním podání CNT sondy (300 mg/mL), rychle zmrazena, rozdrcena a extrahována metodou Bligh & Dyer.
  • Analýza MS/MS: provedeny precursor ion scan na m/z 184 pro fosfatidylcholin (PC) a sfingomyelin (SM) a neutral loss scan m/z 141 pro fosfatidylethanolaminu (PE).
  • Databázové vyhledávání: výsledné spektrální soubory byly importovány do SimLipid, kde se při toleranci 0,2 Da přiřazovaly k více než 5000 možným fosfolipidovým druhům.

Použitá instrumentace


  • UHPLC: kolona Phenomenex Kinetex C8 (150×2,1 mm, 2,6 µm), mobilní fáze A 20 mM formiátu amonného ve vodě, B acetonitril/2-propanol (1:1), gradient 20–100 % B během 35 minut, teplota 45 °C, průtok 0,3 mL/min.
  • MS: Shimadzu LCMS-8060, ESI(+/-), rozptylový plyn 3 L/min, sušící plyn 10 L/min, interface 300 °C, block heater 400 °C, napětí 4 kV/-3 kV.

Hlavní výsledky a diskuse


  • Metoda spolehlivě detekovala desítky druhů PC, SM a PE ve vzorcích jater.
  • Po aplikaci CNT sondy došlo k nárůstu koncentrací dlouhořetězcových a polyenových fosfolipidů (např. PC(38:6), PC(40:6), PE(38:6), PE(40:6)) a k výrazným změnám v několika druzích sfingomyelinů (SM(38:1), SM(40:3), SM(42:3)).
  • Naopak klesly hladiny kratších a méně nenasycených fosfolipidů, například PC(34:1) a PE(34:1).
  • Výsledky potvrzují schopnost sledovat dynamiku lipidového složení při biologických zásazích.

Přínosy a praktické využití metody


  • Rychlá a vysoce specifická identifikace více než stovek fosfolipidových druhů.
  • Široké možné využití v biomarkerovém výzkumu, farmakokinetice a toxikologii.
  • Jednoduchá integrace do rutinních QC/QA protokolů v průmyslové analytice.

Budoucí trendy a možnosti využití


  • Prohloubení analýzy kombinací s vysoko rozlišovacím MS a MRM metodami pro určení složení mastných kyselin.
  • Rozšíření databází fosfolipidů a automatizace zpracování dat pomocí AI nástrojů.
  • Využití pro studium lipidomické variability ve zdravotním a farmaceutickém výzkumu.

Závěr


Schéma založené na LC-TQ-MS ve spojení s databázovým vyhledáváním v SimLipid umožňuje efektivní a kvantitativní profilování fosfolipidů. Aplikace na jaterní model potkanů prokázala schopnost detekovat metabolické změny v reakci na biologický zásah.

Reference


  • Tsuyoshi Nakanishi, Masaki Yamada, Ningombam Sanjib Meitei. Phospholipid characterization by a TQ-MS data based identification scheme. ASMS 2017.

Obsah byl automaticky vytvořen z originálního PDF dokumentu pomocí AI a může obsahovat nepřesnosti.

PDF verze ke stažení a čtení
 

Podobná PDF

Phospholipid analysis using SimLipid software
Solutions for Pharmaceutical Analysis - Application Notebook
Impact of Chromatography on Lipid Profiling of Liver Tissue Extracts
Precise Identification of Molecular Species of Phosphatidylethanolamine and Phosphatidylserine by Neutral Loss Survey with MS3 and Accurate Mass Measurement