Maximizing Efficiency and Performance of Seahorse XF Assays with the Bravo Automated Liquid Handling Platform

Technické články | 2023 | Agilent TechnologiesInstrumentace
Příprava vzorků
Zaměření
Klinická analýza
Výrobce
Agilent Technologies

Význam tématu


Adherentní buněčné assay, jako Seahorse XF, vyžadují opakované pipetovací kroky, které výrazně ovlivňují kvalitu a konzistenci dat. Ruční manipulace vede k variabilitě, poškození buněčných monolayerů a ztrátě času laboratorních pracovníků. Automatizované liquid handling platformy, jako Agilent Bravo, umožňují přesné, opakovatelné a rychlé přípravy vzorků, což zásadním způsobem zvyšuje robustnost assay a podporuje efektivitu výzkumu, zejména v oblastech farmaceutického vývoje a screeningových studií.

Cíle a přehled studie / článku


Studie demonstruje integraci Bravo Automated Liquid Handling Platform s Agilent Seahorse XF96 Analyzerem za účelem automatizace tří klíčových kroků: mytí buněk, příprava injekčních roztoků a plnění injekčních portů XF96 kartridže. Hlavním cílem bylo snížit ruční chyby, zvýšit reprodukovatelnost výsledků napříč mikrotitračními destičkami a snížit počet pracovních kroků.

Použitá metodika a instrumentace


Pro realizaci automatizace byly použity:
  • Bravo Automated Liquid Handling Platform s vyhřívanými bloky pro udržení teploty médií
  • Seahorse XFe96 Analyzer pro měření OCR a ECAR
  • BioTek Cytation 1 pro in situ počítání jader (Hoescht barvení)
  • Agilent labware: XF96 cell culture microplate, 24-column reservoir, 96-well storage plate

Buněčné linie HEK293 a HepG2 byly seedy v hustotách 1,5–3×10^4 buněk/well, myty dvakrát automaticky, poté proběhly tři měření při bazálním stavu. Příprava injekčních roztoků proběhla automaticky včetně 10-krokové 2× sériové ředicí řady FCCP a antimycin-A. Kartridže byly doplněny pomocí Bravo do portů A, B, C v přesně kalibrovaných objemech.

Hlavní výsledky a diskuse


Automatizované mytí buněk nevedlo k poškození monolayeru ani k výrazné ztrátě buněk (CV <5 %). Injekční roztoky byly distribuovány s vysokou přesností, což se odrazilo v téměř identických maximálních respiračních odezvách (CV <3 %). V dosed-response studiích s FCCP i antimycin-A platforma Bravo zajistila reprodukovatelné IC50 hodnoty jak v rámci jedné destičky, tak mezi více destičkami (CV <10 %). V acute inhibition screeningu 72 sloučenin knihovny Pfizer dosahovaly Z´ faktor hodnot >0,8 pro mitochondriální inhibici a >0,77 pro glykolytickou inhibici, což potvrzuje vysokou robustnost metody.

Přínosy a praktické využití metody


  • Minimalizace chybných pipetovacích kroků a rizika kontaminace
  • Zvýšení reproducibility a srovnatelnosti dat napříč mikrotitračními destičkami
  • Snížení „hands-on“ času o 20–60 min/plate, uvolnění kapacity laboratorních pracovníků
  • Možnost škálování studí na vysokopropustné screeningové formáty

Budoucí trendy a možnosti využití


Očekává se rozšíření automatizace na chronické expozice protinádorovým či metabolickým modulátorům před běžným XF měřením, integrace Bravo s robotizovanými kulturami buněk a rozvoj standardizovaných workflow pro další typy assay (glykolytický stres, lipidový metabolismus). Dále lze očekávat synergii se systémem pro vysokorychlostní zobrazování a pokročilé datové softwary pro analýzu kinetických odezev.

Závěr


Automatizace přípravy vzorků pro Seahorse XF assay pomocí Bravo platformy přináší významné zlepšení v datové kvalitě, reproducibilitě a efektivitě workflow. Metoda je vhodná zejména pro rutinní screeningové aplikace a farmakologické studie, kde objem vzorků i počet replik vyžaduje vysokou přesnost a rychlost.

Reference


Obsah byl automaticky vytvořen z originálního PDF dokumentu pomocí AI a může obsahovat nepřesnosti.

PDF verze ke stažení a čtení
 

Podobná PDF

Extracellular Flux Analysis and 13C Stable-Isotope Tracing Reveals Metabolic Changes in LPS-Stimulated Macrophages
Illuminating the Cellular and Molecular Response to Drug Treatment by Combining Bioenergetic Measurements with LC/MS Omics
Illuminating the Cellular and Molecular Response to Drug Treatment by Combining Bioenergetic Measurements with Untargeted Metabolomics
A Holistic View of GLP 1R Agonist–Mediated Cellular Response Revealed Through Orthogonal Technologies